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ProCeD

Prokaryotic Cell Development

Nous cherchons à comprendre comment les interactions moléculaires dynamiques sont régulées dans le temps et dans l’espace pour former des machineries fonctionnelles qui établissent des ordres à long terme et des fonctions cellulaires chez les bactéries, avec un accent particulier sur le cytosquelette bactérien et sur l’enveloppe cellulaire, en première ligne des interactions entre l’environnement et l’hôte et le pathogène.

À cette fin, nous combinons des techniques de pointe à hautes résolutions de microscopie à fluorescence et de spectroscopie avec de puissantes approches génétiques, biophysiques, biochimiques et de biologie des systèmes pour déterminer les détails mécanistiques qui sous-tendent les fonctions cellulaires et de développement chez les bactéries. Nous étudions en particulier (mais pas uniquement) la bactérie modèle Gram-positive en forme de bâtonnet Bacillus subtilis et le pathogène Gram-négatif ESKAPE Pseudomonas aeruginosa (classé par l’Organisation mondiale de la santé (OMS) comme pathogène de priorité 1 (critique) pour la R&D dans la recherche antimicrobienne). Nos travaux actuels suivent 3 axes de recherche principaux :

Axes de recherche

GFP-MreB imaged by  SIM-TIR

On sait peu de choses sur les mécanismes qui déterminent la forme des cellules, et les grandes questions concernant la morphogenèse sont les mêmes dans les systèmes procaryotes et eucaryotes. Comment l’information structurale est-elle acquise et maintenue ? Comment la forme de la cellule est-elle régulée dans l’espace et dans le temps ? Chez les bactéries, la paroi cellulaire extracellulaire (un réseau de polymères 3D à l’échelle du micromètre et la cible la plus importante des antibiotiques) et le cytosquelette intracellulaire de type actine (MreB) sont des déterminants majeurs de la forme de la cellule. Nous avons montré, avec d’autres, que les protéines MreB s’assemblent en nanofilaments associés à la membrane qui se déplacent de manière processive à la périphérie de la cellule et contrôlent la forme en organisant et en orientant les enzymes transmembranaires qui effectuent l’élongation des parois latérales dans l’espace extracellulaire. Les propriétés des assemblages de MreB, les détails mécanistiques qui sous-tendent leur fonction morphogénétique et l’interaction entre MreB, la membrane plasmique et les mécanismes de synthèse de la paroi cellulaire restent cependant à élucider.

MreB from G.stearothermophilus

Dans le cadre du projet principal de notre laboratoire, actuellement soutenu par une financement ERC-CoG et précédemment par une financement ERC-StG, nous étudions les détails mécanistiques qui sous-tendent la croissance de la paroi cellulaire, l’organisation de la membrane et la (les) fonction(s) de MreB en utilisant une combinaison d’approches in vivo et in vitro. La recherche sur les actines bactériennes est importante car certains mécanismes pourraient être conservés dans les organismes supérieurs et/ou fournir des indices évolutifs. Réciproquement, la recherche sur la paroi cellulaire propre aux bactéries est également très importante car elle fournit des stratégies potentielles pour le développement d’antimicrobiens à une époque où la multirésistance aux antibiotiques est devenue un problème de santé majeur. Nos objectifs à long terme sont de comprendre les principes généraux de la morphogenèse cellulaire bactérienne et des actines bactériennes afin de fournir des modèles mécanistes et de nouveaux rapporteurs pour le criblage de nouveaux antibiotiques.

Prokaryotic Cell Development
S. pneumoniae

Nous explorons également la biologie cellulaire des processus intervenant à travers la paroi cellulaire bactérienne et/ou nécessitant un remodelage de la paroi cellulaire. Il s’agit actuellement de l’infection par les phages, de la compétence génétique et de la sporulation. Il s’agit en général de projets collaboratifs principalement financés par l’ANR (Agence nationale de la recherche française)

  • En collaboration avec le laboratoire de Paulo Tavares (i2BC, Gif-sur-Yvette, France), spécialisé dans la biologie des phages, nous étudions la biologie cellulaire de l’infection par les phages. Le système biologique étudié est le bactériophage bien caractérisé SPP1 qui infecte B. subtilis. Nous avons découvert que pendant l’infection, SPP1 construit des usines spatialement indépendantes pour la réplication du génome viral et l’assemblage des particules virales dans le cytoplasme bactérien. Notre collaboration vise à caractériser les mécanismes moléculaires et cellulaires qui sous-tendent la formation de ces usines.
  • En collaboration avec l’équipe de Nathalie Campo (LMGM, Toulouse,France) et Christophe Grangeasse (MMBS, Lyon), nous étudions la compétence pour la transformation génétique du pathogène humain Streptococcus pneumoniae (le streptocoque). Notre projet se concentre sur la caractérisation moléculaire d’un arrêt programmé de la division cellulaire qui se produit pendant la compétence, dans le but de comprendre comment le pneumocoque coordonne la compétence pour la transformation génétique avec son cycle de vie.
  • Face à un stress nutritionnel sévère, B. subtilis forme des endospores très résistantes. La voie de la sporulation est probablement le programme de développement le mieux étudié chez les bactéries. Cependant, la fonction de nombreux gènes exprimés au cours de ce processus reste un mystère. En collaboration avec Ciaran Condon (IPBC, Paris, France) et Adriano Henriques (ITQB, Lisbonne, Portugal), nous essayons de comprendre le rôle d’une ribonucléase orpheline qui est exprimée spécifiquement dans la cellule mère pendant la sporulation et qui pourrait avoir un rôle dans l’assemblage du manteau de la spore.

Nous étudions le mode d’action des antibiotiques ciblant l’enveloppe cellulaire à la fois chez B. subtilis et chez P. aeruginosa, l’agent pathogène ESKAPE de priorité 1 de l’OMS.

  • Chez B. subtilis, nous réalisons des études intégrées de biologie des systèmes sur le mode d’action des antibiotiques ciblant différentes étapes de la synthèse de la paroi cellulaire (peptidoglycane), que nous associons ensuite à des études mécanistiques (axe 1).
  • Chez P. aeruginosa, nous étudions le mode d’action et la resensibilisation à l’antibiotique de dernier recours, la colistine, ainsi que les mécanismes contrôlant les modes d’infection de P. aeruginosa. P. aeruginosa est capable de passer d’un mode de vie planctonique à un mode de vie sédentaire en biofilm, correspondant respectivement à des infections aiguës et chroniques. Parallèlement aux études de biologie cellulaire, nous mettons en œuvre des outils et des méthodes d’imagerie de fluorescence à haute résolution pour visualiser les cellules vivantes de P. aeruginosa à différentes échelles : cellule unique – biofilm – cellules épithéliales des voies respiratoires humaines, afin de reproduire l’environnement pulmonaire. Nos recherches sur Pseudomonas bénéficient d’excellentes collaborations avec les équipes de Steve Porter (Exeter University, UK), Romain Briandet (Micalis, B3D), Craig MacLean (Oxford University, UK), Florence Vincent (AFMB, Aix-Marseille University, France), Rosa del Campo (University Hospital Ramon y Cajal of Madrid, Spain), Vinciane Saint-Criq (Micalis, ProbiHôte) et Stefano Pagliara (Exeter University, UK).

Membres de l'équipe

Paprapach WONGDONTREE

Merve Nur TUNÇ

Matteo GERARD

Aurélien BARBOTIN

Claire-Jing ROUCHET

Rut CARBALLIDO LOPEZ

Cyrille BILLAUDEAU

Arnaud CHASTANET

Dimitri JUILLOT

Ingrid ADRIAANS

Armand LABLAINE

  • Charlène CORNILLEAU (2013-2023, Ingénieur / Doctorant / Post-doc)
  • Clara LOUCHE (2023-2023, Ingénieur)
  • Sana AFENSISS (2022-2023, Ingénieur)
  • Laurie-Anne TRIVAL (2021-2023, Ingénieur)
  • Caroline PERON-CANE (2019-2023, Post-doc)
  • Sarah BENLAMARA (2020-2022, Ingénieur)
  • Maria-Victoria PREJEAN (2010-2022, Technicien)
  • Ipek ALTINOGLU (2019-2021, Post-doc)
  • Vlad COSTACHE (2020-2021, Post-doc)
  • Yunjiao LU (2017-2020, Doctorant)
  • Magali VENTROUX (2015-2020, Ingénieur)
  • Peggy MERVELET (1998-2020, Technicien)
  • Alexis CARREAUX (2019-2020, Ingénieur)
  • Wei MAO (2017-2020, Post-doc)
  • Ruth KEARY (2014-2019, Post-doc)
  • Sriram TIRUVADI-KRISHNAN (2017-2019, Post-doc)
  • Elisa BRAMBILLA (2016-2017, Post-doc)
  • Benoît TESSON (2014-2017, Post-doc)
  • Alba DE SAN EUSTAQUIO CAMPILLO (2013-2017, Doctorant)
  • Xavier HENRY (2014-2016, Post-doc)
  • Alex DAJKOVIC (2012-2016, Post-doc)
  • Pierre FLORES (2012-2016, Doctorant)
  • Cécile FERRET (2013-2016, Ingénieur)
  • Nicolas MIROUZE (2012-2016, Post-doc)
  • Smita CHAUHAN (2014-2016, Ingénieur)
  • Céline MONNIOT (2014-2015, Post-doc)
  • Zhizhong YAO (2013-2015, Post-doc)
  • Calum MACKICHAN (2008-2013, Doctorant)
  • Yoan AH-SENG (2011-2012, Post-doc)
  • Célia PALCY (2010-2012, Ingénieur)
  • Anne-Stefanie RUEFF (2008-2011, Doctorant)
  • Elodie MARCHADIER (2005-2009, Doctorant)
  •  
  • 2024: Philéas LARCHER, Hind OUKLFIF, Sumudu Upatissa
  • 2023: Thomas HAINAUT, Joseph NAKFOUR, Emma WALKER
  • 2022: Ali DAKROUB, Louise DESTOUCHES, Lilia HUYNH, Elena THOMANN
  • 2021: Lea WAGNER
  • 2017: Lorenzo CARRE, Marine GUITON
  • 2015: Sina KROKOWSKI, Quentin SANDRO
  • 2014: Andreia TAVARES
  • 2010: Anaiss SAQUET

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